细胞融合实验报告蛋白水平「在线咨询」

细胞实验介绍——慢-建立稳转细胞系

慢-包装：公司使用3质粒慢-包装系统，慢-系统使用plko.1-egfp、pspax2、pmd2.g，过表达慢-系统使用plvx-acgfp、pspax2、pmd2.g三质粒系统，将质粒混匀后使用磷酸钙转染方法转染至hek293t细胞中，培养48h后，收集上清。使用genecopo公司慢-颗粒纯化试剂盒将慢-纯化。纯化后留取部分检测-滴度，其余-冻存于-80℃冰箱中。

滴度检测：将-颗粒使用梯度稀释，分别293t细胞，72h后，在荧光显微镜下观察细胞荧光表达情况。根据细胞荧光量计算-滴度。

细胞：在-前-对细胞进行计数，接种约10000个细胞于12孔板中，培养过夜后使用无培养基稀释-，加入12孔板中对细胞进行，-数量根据细胞的moi加入若无moi，需做-梯度：1,5,10,50,100 5个梯度对细胞，6h后去除含-溶液，加入完全培养基细胞培养，培养48h后，在荧光显微镜下观察细胞荧光强度。同时加入puromycin对细胞筛选，筛选约2周时间。细胞筛选好后，使用定量pcr和western blot检测目的基因的稳定表达情况。

实验流程：慢-质粒构建-hek293t细胞培养-质粒转染293t细胞--收集--纯化--滴度检测-细胞-稳转细胞筛选-稳转细胞鉴定

结果示例：

                                               图 a -滴度检测；b 目的细胞-效果图

mtt检测

mtt 是一种检测细胞存活和生长的方法。其检测原理为活xi胞线粒体中的-脱氢酶能使外源性 mtt 还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒formazan并沉积在细胞中，而-无此功能。二jia基-dmso能溶解细胞中的甲瓒，用酶联免yi检测仪在 570nm 波长处测定其光吸收值，可间接反映活xi胞数量。

成纤维细胞分离方法

1.处死孕鼠，全身置于75%酒精里浸泡，然后在超净台中用剪刀和镊子将孕鼠皮肤剪开，用另外- -组剪刀、镊子剪开腹部肌层，露出，后用第三组剪刀和镊子将小心取出放在盛有d-pbs的玻璃平皿中，冲洗去血。

2.用两把弯镊子将胚胎外的胞膜小心去除，然后夹掉头和内脏，将其余胚胎转移到一个装有30 ml d-pbs的50 ml离心管中，轻轻颠倒两次，倒掉d-pbs,再重复此步骤一次，注意要留少许d-pbs，然后将胚胎转移到另- -装有d-pbs的平皿中，并用手术刀片将其细细切碎。

3. 用200 μ的移液枪反复、快速地吹打平皿中的液体，转移至15 ml离心管中，于4c 1500 rpm离心5分钟，倒掉上清，以10 ml胰酶重悬沉淀，放在37c水浴中-30分钟，且每隔五分钟轻轻晃动，使之充分-。

4.将上层细胞悬液倒入一个装有10 ml mef生长培养基的50 ml离心管中，用200目的尼龙网过滤后，以1500 rpm离心5分钟收集细胞，再用30 ml mef生长培养基洗涤两次。

5.细胞沉淀用15 ml mef生长培养基重悬后进行细胞计数(- -般8只14天的胎鼠可获得2-3x107细胞)。

6. 3x106细胞悬浮于15 ml mef生长培养基中，接种到200 ml培养瓶中。

7. 24小时后更换新鲜的mef生长培养基。

8.细胞长满后，先用d-pbs冲洗，倒掉后加胰酶-(此步时间不宜过长，作者- -般不超过五分钟)，按1:5传代。

9. 细胞再次长到覆盖率80-90%左右， 将其-后，常规冻存(冻存液要现配)。

细胞传代培养

操作步骤

1.将长满细胞的培养瓶中原来的培养液弃去。

2、加入0.5- -1ml 0.25%胰酶溶液，使瓶底细胞都浸入溶液中。

3、瓶口塞好橡皮塞，放在倒置镜下观察细胞。随着时间的推移，原贴壁的细胞逐渐趋于圆形，在还未漂起时将胰酶弃去，加入10m培养液终止-。观察-也可以用肉眼，当见到瓶底发白并出现细zhen孔空隙时终止-。一般室温-时间约为1- -3分钟。

4、用吸管将贴壁的细胞吹打成悬液，分到另外两到三瓶中，实践培养液塞好橡皮塞，置37°c下继续培养。第二天观察贴壁生长情况。

附:-液配制方法:

称取0.25克胰酶蛋白酶(活力为1 : 250)， 加入100ml无ca2+、mg2+的hanks液溶解，滤器过滤chu菌，4°c保存,用前可在379c下回温。胰酶溶液中也可加入edta，使zui终浓度达0.02%。