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在玻璃烧杯中注入去离子水，加入depc使其终浓度为0.05%~0.1%depc-h2o。depc二焦---为活性很强的物，须在通风橱中小心使用
将待处理的塑料制品放入一个可以高温灭菌的容器中，注入depc-h2o，使塑料制品的所有部分都浸泡到溶液中，pcr，在通风柜中37℃ 或室温下处理过夜。
将depc-h2o小心倒入废液瓶中，fish检测，将装有depc- h2o 处理过的塑料制品的容器以铝箔封口，高温高压蒸汽灭菌至少30分钟。
灭菌塑料制品烘烤干燥，置洁净处备用。
玻璃和金属物品250 ℃烘烤3小时以上。
7.如何检测引物的纯度？
答：实验室方便的作法是用page方法。使用加有7m尿素的16%的聚---凝胶进行电泳。取0.2-0.5od的引物，用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和，上样前加热变性(95℃，pcr，2mins)。加入尿素的目的一是变性，二是增加样品比重，容易加样。600v电压进行电泳，一定时间后(约2-3小时)，剥胶，用荧光tlc板在紫外灯下检测带型，在主带之下没有杂带，说明纯度是好的。如果条件许可，也可以用eb 染色或银染方式染色。
而有的厂家提供maldi-tof质谱qc控制，从而保障了合成的准确率：
bioneer使用多重maldi-tof质谱仪进行全自动装载及监测。 每份样品的质谱分析数据将自动插入到寡核苷酸的信息单中。bioneer是上仅有的几个对生产的每份核苷酸 (单个寡核苷酸和高通量和成) 都用maldi-tof质谱仪检测进行核苷酸qc检测的厂商，而且免费提供质谱数据。
8.如何计算引物的浓度？
答：引物保存在高浓度的状况下比较稳定。引物一般配制成10-50pmol/ul。 一般情况下，建议将引物的浓度配制成50pmol/ul，加水的体积微升按下列方式计算：v (微升)= od数*乘33 *乘*乘20000 / (除) 引物的分子量。引物的分子量可以从合成报告单上获得。如果需要配制成其他浓度，按上述公式换算。
注意：1 od260= 33 ug/ml.
5.长可以合成多长的引物？
答：引物越长，出现问题的概率就越大。有的公司合成过120base的引物，产率很低。除非需要，建议合成片段长度不要超过80mer，按照目前的引物合---率，80mer的粗产品，全长还不一定正确引物的百分比不会超过40%，后续处理还有丢失很多，的产量很低。
6.需要合成多少od数？
答：根据实验目的确定。一般pcr扩增，2 od引物，可以做200-500次50ul标准pcr反应。如果是做基因拼接或退火后做连接，实时定量pcr，1 od就足够了。但是有些研究人员，就做几次pcr，但是却要5-10 od。做全基因构建的引物都比较长，但是我们有些研究人员也要求高od数。片段越长， 全长得率就越低，出错的几率就越大。超出需要之外的od数要求，其实也是对社会资源的一种浪费，同时也从一个侧面反映了部分研究人员---是新手的自信心不足，总觉得需要重复多次才能成功。
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